Conteúdo gástrico e duodenal.

Estudo dos principais indicadores do suco gástrico

O suco gástrico é um produto da atividade exócrina e excretora das glândulas estomacais; possui um complexo inorgânico (água, ácido clorídrico, cloretos, sulfatos, fosfatos, bicarbonatos, amônia, sódio, potássio, cálcio, magnésio, hidrogênio) e orgânico ( representado por substâncias de natureza proteica e não proteica), que se diferencia das demais secreções digestivas pela reação ácida pronunciada, pelas características das enzimas e dos compostos de alto peso molecular. Seu volume e composição variam dependendo da proporção de fatores nervosos e humorais, do tipo e força do estímulo, das características da espécie e da idade e da pressão na cavidade estomacal.

Uma pessoa secreta cerca de 2–2,5 litros de suco por dia - um líquido incolor (densidade relativa 1,002–1,007) e inodoro. Sua cor e propriedades variam pela presença de saliva, bile, sangue, sucos pancreáticos e intestinais. Com baixa acidez e evacuação prejudicada, pode adquirir odor devido a restos de alimentos fermentados. O suco gástrico possui propriedades bactericidas e bacteriostáticas pronunciadas, em cuja origem o ácido clorídrico (HCl) é de grande importância. A dependência do grau de atividade bactericida do suco neutro ou levemente alcalino na intensidade da leucopedese gástrica também difere. O principal processo enzimático na cavidade gástrica é a hidrólise inicial de proteínas. Na prática clínica, os estudos laboratoriais de diagnóstico do conteúdo gástrico são mais frequentemente realizados para determinar: indicadores de secreção ácida e atividade enzimática; indicadores de citoproteção; flora microbiana do estômago.

Métodos de intubação gástrica

Os métodos para estudos funcionais da secreção gástrica podem ser divididos em dois grupos:
1. Sondas:
aspiração fracionada;
perfusão intragástrica;
titulação intragástrica;
pHmetria intragástrica.
2. Sem sonda:
teste com azul de metileno (teste de Sali);
pesquisas utilizando resinas de troca iônica;
ácidoteste;
determinação de uropepsina;
método de radiotelemetria;
determinação de secreção pelo indicador Congo Red;
teste com Azure A;
determinação de pepsinogênios séricos do grupo I.

Atualmente, os métodos sem sonda são raramente utilizados, pois existem métodos mais informativos, seguros e simples, como aspiração, fracionada com estimulação com pentagastrina e pHmetria intragástrica. Os estudos da função produtora de ácido do estômago na clínica tornaram-se possíveis após a proposta de sondar o estômago com sonda especial e estimulantes para secreção de ácido clorídrico. Inicialmente, eram oferecidos cafés da manhã experimentais enterais: caldo de carne; suco de repolho; solução de cafeína.

No entanto, os resultados obtidos pelos diferentes investigadores variaram significativamente entre si, o que acabou por forçar o abandono destes pequenos-almoços experimentais. Foi descoberto o efeito estimulante da histamina na função secretora do estômago. Atualmente, o teste submáximo de histamina (0,008 mg/kg de cloridrato de histamina por via subcutânea) e o teste máximo de histamina mais informativo (0,025 mg/kg de cloridrato de histamina por via subcutânea) são amplamente utilizados na prática clínica. A desvantagem da histamina é a possibilidade de efeitos colaterais (reações vasculares). A reação secretora máxima do estômago também é observada com a administração subcutânea de 6 μg/kg do tetrapeptídeo C-terminal gastrina-pentagastrina, que praticamente não causa reações adversas.

Método de aspiração fracionada de sondagem gástrica. A pesquisa de aspiração fracionada da secreção gástrica é atualmente realizada quase da mesma forma em todos os laboratórios clínicos e está focada no indicador integral - a produção de ácido clorídrico por unidade de tempo, levando em consideração o volume de secreção.

O princípio da detecção. Obtenção de secreção gástrica pura por aspiração ativa em vários estágios da atividade secretora do estômago. Equipamento:
Sonda fina (tubo oco de borracha com diâmetro de 4–5 mm, comprimento de cerca de 1,5 m com marcas a uma distância de 50–55 cm e 70–75 cm da extremidade cega da sonda).
Tubos de ensaio.
Suportes para tubos de ensaio.
Bandeja.
Funil.
Uma seringa com capacidade para 20 ml, ou uma bomba de jato de água padrão, ou uma aspiração a vácuo.
Um dos estimulantes ativos da secreção gástrica.

Sondando o progresso. É melhor fazer a sondagem em uma sala especial. Antes de estudar a função secretora do estômago, é necessário interromper os medicamentos pelo menos 24 horas antes do estudo e geralmente realizá-lo pela manhã, após jejum de 14 horas. A extremidade de uma sonda fina é colocada nas profundezas da faringe, na raiz da língua, e vários movimentos de deglutição vagarosos são sugeridos, devido aos quais a sonda se move ao longo do esôfago. A inserção da sonda até a primeira marca indica que sua extremidade interna está no fundo do estômago, e o avanço da sonda até a segunda marca indica que ela atingiu o piloro do estômago. Uma condição necessária para a extração completa do conteúdo gástrico é a inserção de uma sonda até a profundidade calculada da seguinte forma: altura do paciente em centímetros menos 100.

Após a inserção da sonda, o conteúdo do estômago é totalmente retirado com o estômago vazio, o que constitui uma porção separada para pesquisa. Então, em uma hora, são coletadas as secreções gástricas, liberadas como resultado da influência estimulante da sonda e da aspiração - secreção basal (saída de ácido basal, ou BAO). Em seguida, eles iniciam a estimulação ativa da mucosa gástrica com a introdução de um estimulante enteral ou parenteral, após o qual o suco gástrico também é coletado dentro de uma hora - secreção estimulada ou máxima (produção máxima de ácido, ou MAO). A aspiração do suco basal e estimulado é realizada a cada 15 minutos da primeira e segunda hora de sondagem. Assim, a cada hora são obtidas 4 porções de suco gástrico, que constituem a chamada tensão horária do período correspondente de secreção gástrica. As porções resultantes de suco gástrico são submetidas a pesquisas físicas e químicas. São examinadas um total de 9 porções: uma porção recebida com o estômago vazio, depois 4 porções a cada 15 minutos da primeira hora de sondagem e 4 porções durante a segunda hora de sondagem.

Exame do conteúdo gástrico

O estudo do suco gástrico inclui determinação de propriedades físicas, exame químico e microscópico.

Propriedades físicas. Quantidade. Cada porção de suco gástrico é medida e seu volume calculado em todas as fases do ciclo secretor. O volume de suco com o estômago vazio não deve ultrapassar 50 ml, em condições de secreção basal o volume de suco por hora pode ser de 50–100 ml, na fase de secreção estimulada em resposta a um estímulo alimentar - 50–110 ml, em resposta à estimulação submáxima com histamina 100–140 ml. O volume horário de suco gástrico em resposta à estimulação com doses máximas de histamina de acordo com Kay é de 180–220 ml.

Cheiro. O conteúdo gástrico normal não tem odor ou é ligeiramente ácido. Com a diminuição do teor de ácido clorídrico ou sua ausência total, o conteúdo gástrico adquire um cheiro peculiar de ácido butírico, láctico ou acético devido aos produtos da fermentação resultantes. Se processos de putrefação se desenvolverem no estômago devido à decomposição de proteínas ou à desintegração de um tumor cancerígeno, o suco gástrico adquire um odor pútrido. Um odor pútrido também pode indicar uma violação da evacuação gástrica.

Cor. O conteúdo gástrico normal é incolor. Na presença de bile na aquília ela apresenta coloração amarela, na presença de ácido clorídrico é verde devido ao fato de que em ambiente ácido a bilirrubina da bile é oxidada em biliverdina. A cor do conteúdo gástrico também muda na presença de sangue. Sob a influência do ácido clorídrico, a hemoglobina do sangue é convertida em hematina de ácido clorídrico, conferindo ao conteúdo gástrico uma cor marrom mais ou menos intensa. Se não houver ácido clorídrico no conteúdo gástrico, sua cor quando misturada ao sangue é vermelha. A intensidade da cor depende do grau de sangramento.

Limo. Normalmente presente no suco gástrico em pequenas quantidades. Um aumento no conteúdo de muco é observado na gastrite e outras lesões da mucosa gástrica. O muco flutuando na superfície do suco gástrico é a saliva, o escarro ou o conteúdo da parte nasal da faringe, está saturado de ar, luz, na forma de flocos grossos e caroços, e não tem valor diagnóstico.

Impurezas. Restos de massas alimentares que podem ser detectados indicam uma violação da evacuação do estômago.

Pesquisa química. O exame químico do conteúdo gástrico permite obter informações sobre as funções ácidas, enzimáticas, formadoras de proteínas e outras funções do estômago.

Estudo da função formadora de ácido do estômago. A acidez total do suco gástrico consiste em três valências ácidas: ácido clorídrico livre (dissociado), ácido clorídrico ligado e um resíduo ácido. A acidez livre, concentração de íons hidrogênio [H+], deve ser entendida como a concentração de ácido clorídrico livre e completamente dissociado.

A acidez ligada deve ser entendida como a concentração de íons hidrogênio ligados a grupos carboxila de proteínas e peptídeos. O resíduo ácido contém ácidos orgânicos (butírico, láctico, acético) e fosfatos de reação ácida. A forma mais comum de medir a acidez do suco gástrico é titulá-lo com um álcali forte (solução de NaOH 0,1 N) na presença de indicadores que mudam de cor dependendo do pH do meio.

Para determinar a acidez total do suco gástrico, utiliza-se o indicador fenolftaleína, que permanece incolor em ambiente ácido e torna-se rosa em ambiente alcalino, em pH 8,2–10,0. O indicador laranja dimetilaminoazobenzeno torna-se vermelho na presença de ácido clorídrico livre em pH 2,4–4,0 e, na sua ausência, torna-se laranja ou amarelo. O indicador ácido alizarino sulfônico sódico, que tem cor cereja, torna-se amarelo em ambiente ácido e roxo na zona de pH de 4,3–6,3. Na presença deste indicador, o ácido clorídrico livre e o resíduo ácido do conteúdo gástrico são titulados.

Se o indicador dimetilaminoazobenzeno mudar de cor para vermelho quando adicionado ao suco gástrico, o método Michaelis é usado para titulação. Se o dimetilaminoazobenzeno mudar de cor para amarelo, o suco gástrico deve ser titulado pelo método de Tepffer. Ao determinar a acidez do suco gástrico por métodos de titulação, é necessário monitorar rigorosamente a mudança de cor nas xícaras e observar com precisão o nível de álcali na bureta.

Método Michaelis. Reagentes: solução alcoólica de fenolftaleína a 1%, solução alcoólica de dimetilaminoazobenzeno a 0,5%, solução de hidróxido de sódio 0,1 N.

Utensílios e equipamentos. Buretas com capacidade de 25, 50 ou 100 ml, suporte de Bunsen, béqueres com capacidade de 50 ml, funis, pipetas graduadas com capacidade de 5 ml ou 10 ml.

Progresso do estudo. Meça 5 ml de suco gástrico filtrado através de 2 camadas de gaze em um copo e, em seguida, adicione 1–3 gotas de solução de dimetilaminoazobenzeno e 1–2 gotas de solução de fenolftaleína. Titular 0,1 N. solução de hidróxido de sódio com agitação constante. Anote preliminarmente o nível da solução de hidróxido de sódio 0,1 N na bureta (nível I).

As seguintes quantidades são determinadas:
a quantidade de álcali utilizada para titular o suco gástrico da cor inicial vermelha para laranja (nível II);
a quantidade de álcali utilizada para titulação do laranja ao amarelo limão (nível III);
a quantidade de álcali gasta na titulação do vermelho ao rosa persistente (nível IV).

Cálculo. A quantidade de álcali utilizada para titulação até a primeira mudança de cor (diferença entre os níveis II e I) determina a concentração de HCl livre no suco gástrico. A quantidade de álcali utilizada para toda a titulação, desde a cor vermelha do dimetilaminoazobenzeno em ambiente fortemente ácido até a cor vermelha da fenolftaleína em ambiente alcalino, ou seja, a diferença entre os níveis IV e I, corresponde à acidez total. A quantidade de álcali utilizada para titulação até um nível que representa a média aritmética entre os níveis III e IV corresponde à concentração de HCl total (ou seja, a soma de HCl livre e ligado), e a concentração de HCl ligado é encontrada pela diferença entre HCl total e HCl livre. A diferença entre a acidez total e o HCl total é chamada de resíduo ácido. Assim, todas as substâncias que reagem com ácido são determinadas em uma porção.

Exemplo de cálculo. Nível I na bureta - 4, nível II - 5,4 (cor amarelo-laranja), nível III - 6 (cor amarelo limão), nível IV - 6,8 (rosa persistente). A média aritmética entre os níveis III e IV é 6,4. Para a titulação foram retirados 5 ml de suco gástrico, o cálculo é feito por 100 ml, portanto a quantidade de álcali gasta nas diferentes etapas da titulação é multiplicada por 20 (se 10 ml de suco gástrico forem titulados, então multiplicado por 10 respectivamente ).

HCl livre: 5,4–4=1,4x20=28
Acidez total: 6,8–4=2,8x20=56
Soma de HCl livre e ligado: 6,4–4=2x20=48
HCl ligado: 48–28=20
Resíduo ácido: 56–48=8

Determinação unificada de acidez pelo método Tepffer. Reagentes:
Solução alcoólica a 1% de fenolftaleína. Intervalo de transição de cor em pH 8,2–10,0.
Solução alcoólica a 0,5% de dimetilaminoazobenzeno. Intervalo de transição de cor em pH 2,9–4,0.
Solução aquosa a 1% de ácido alizarina sulfônico sódico. Intervalo de transição de cor em pH 4,3–6,3.
Solução de hidróxido de sódio 0,1 N.

Progresso do estudo. Meça 5 ml de suco gástrico filtrado em 2 copos. Adicione 2 gotas de dimetilaminoazobenzeno e fenolftaleína à primeira porção e determine a concentração de HCl livre e a acidez total. Uma gota de alizarina ácido sulfônico sódico é adicionada à segunda porção do suco gástrico e titulada até que a cor amarela mude para violeta fraco. Na zona de transição deste indicador, as substâncias reagentes ácidas são neutralizadas, exceto o HCl ligado, que é encontrado pela diferença entre o volume de álcali utilizado para neutralizar todas as valências ácidas do suco gástrico (titulação com fenolftaleína) e o volume utilizado para titulação com alizarina ácido sulfônico sódico. Todos os valores obtidos são multiplicados por 20 para recalcular por 100 ml de suco gástrico.

Nos casos em que o volume de suco gástrico obtido é pequeno, utiliza-se um método microquímico para determinar a acidez. Equipamento. Microbureta. Os reagentes são os mesmos do método Michaelis.

Progresso do estudo. Coloque 1 ml de suco filtrado e 5 ml de água destilada em um copo de titulação. Titulando a partir de uma microbureta, determine a concentração de HCl livre e a acidez total usando o método Michaelis.

Cálculo. O teor de HCl livre é igual à quantidade de álcali utilizada para titulação até a cor amarelo-laranja (cor salmão) do dimetilaminoazobenzeno, multiplicada por 100. A acidez total corresponde à quantidade de álcali utilizada para toda a titulação, reduzida em 0,05. (correção do indicador) e multiplicado por 100. Em baixa acidez, a correção do indicador deve ser igual a 0,03.

Maneiras de expressar acidez. A forma tradicional de expressar a acidez do suco gástrico são as unidades de titulação (TU) - o volume de hidróxido de sódio 0,1 N necessário para neutralizar as valências ácidas em 100 ml de suco gástrico. Nos últimos anos, a concentração de HCl no suco gástrico tem sido mais comumente expressa em milimoles por 1 litro de suco gástrico. Sabe-se que 1 ml de solução de hidróxido de sódio 0,1 N equivale a 1 ml de solução de HCl 0,1 N (1 TE), ou 0,1 mmol de HCl, portanto a concentração de HCl em 100 ml de suco, expressa em milimoles de HCl, é 10 vezes menos do que em unidades de titulação.

Exemplo. Se a concentração de HCl for 40 TE, isso corresponde a uma concentração de 4 mmol em 100 ml de suco, ou 40 mmol em 1 litro de suco. Assim, o valor numérico da concentração de HCl, expresso em unidades de titulação, coincide com o valor numérico da concentração de HCl, expresso em milimoles por 1 litro (40 TE = 40 mmol/l HCl).

Taxa de fluxo de ácido clorídrico. Este indicador reflete a quantidade total de ácido clorídrico secretado pelo estômago durante um determinado período de tempo. Normalmente, a vazão é determinada ao longo de 1 hora e é expressa em milimoles (1 mmol = 36,5 mg de ácido clorídrico).

Distinguem-se: Taxa de fluxo de HCl livre; HCl ligado. HCl (produtos ácidos). Este último indicador é determinado com base nos valores de acidez total. A hora de débito é determinada apenas se todo o conteúdo gástrico for recebido em uma hora. A quantidade de produção de ácido é calculada usando duas fórmulas, que diferem ligeiramente entre si dependendo da expressão da vazão (em miligramas ou milimoles) de HCl.

Para calcular a vazão de HCl em miligramas, utilize a seguinte fórmula: D=V1 x E1 x 0,0365+V2 x E2 x 0,0365+..., onde D é a vazão de HCl (mg); V é o volume de uma porção de suco gástrico (ml); E - concentração de HCl (TE); 0,0365 - o número de miligramas de HCl em 1 ml de suco na concentração de 1 TE.

O número de termos é determinado pelo número de partes durante o estudo. Para calcular a vazão de HCl em milimoles (para HCl esses valores são iguais), outra fórmula é usada: D = ((V1 x E1)/1000)+((V2 x E2)/1000)+ ... , onde D é a taxa de fluxo de HCl (mmol), e as notações restantes são as mesmas da fórmula anterior.

Taxa de fluxo de ácido clorídrico ">

Nomograma para determinação da vazão de ácido clorídrico.

Para facilitar o cálculo do fluxo-hora de HCl, você pode usar um nomograma. Uma régua é usada para conectar os números marcados nos ramos opostos da curva, correspondentes ao volume e à acidez de uma determinada porção do suco gástrico. Na intersecção da régua com a linha vertical encontra-se o valor da vazão, expresso em miligramas de HCl ou milimoles de HCl.

Níveis normais de acidez. Secreção basal.
Volume horário - 50–100 ml

Ácido clorídrico livre - 20–40 mmol/l
Ácido clorídrico ligado - 10–20 mmol/l

HCl por hora de fluxo - 1,5–5,5 mmol/h
Débito-hora de HCl livre - 1,0–4,0 mmol/h
Reação secretora do estômago aos estímulos dos testes alimentares
Volume horário - 50–110 ml
Acidez total - 40–60 mmol/l
HCl livre - 20–40 mmol/l
HCl ligado - 10–20 mmol/l
Resíduo ácido - 2–8 mmol/l
HCl hora de fluxo - 1,5–6,0 mmol/h
Débito-hora de HCl livre - 1,0–4,5 mmol/h

Reação secretora do estômago à estimulação submáxima de histamina.
Volume horário - 100–140 ml
Acidez total - 80–100 mmol/l
HCl livre - 65–85 mmol/l
HCl ligado - 12–23 mmol/l
Resíduo ácido - 3,0–12 mmol/l
Fluxo-hora de HCl - 8,0–14,0 mmol/h
Débito-hora de HCl livre - 6,5–14,0 mmol/h

Reação secretora do estômago à estimulação máxima de histamina.
Volume horário - 180–220 ml
Acidez total - 100–120 mmol/l
HCl livre - 90–110 mmol/l
HCl ligado - 10–15 mmol/l
HCl por hora de fluxo - 18–26 mmol/h
Débito-hora de HCl livre - 16–24 mmol/h

Método de perfusão intragástrica. Uma das desvantagens significativas do método de aspiração fracionada é a incapacidade de aspirar o suco. Sujeito a todas as regras do estudo, é possível obter no máximo 46,3–85% de suco gástrico secretado. A este respeito, foi proposto um método de perfusão intragástrica. O princípio do método baseia-se na determinação da completude da aspiração de cada porção de suco gástrico e no cálculo da quantidade de produção de ácido levando em consideração a quantidade de secreção não aspirada.

Método de titulação intragástrica. Os métodos de aspiração eliminam um componente tão importante da resposta secretora à ingestão de alimentos como a distensão gástrica. Para eliminar esse fator, foi desenvolvido um método de titulação intragástrica. O princípio do método é titular o ácido produzido pelo estômago com um álcali diretamente na cavidade estomacal. A titulação intragástrica é usada para estudar a resposta secretora do estômago aos alimentos ou a qualquer um de seus ingredientes.

pHmetria intragástrica. Na prática clínica, um método para estudar a função de formação de ácido do estômago é usado ativamente, como a pHmetria intragástrica usando sondas de pH originais de uma, duas e três azeitonas projetadas por E.Yu. Linara. A vantagem da pHmetria é a possibilidade de registro contínuo e simultâneo do pH do corpo, antro do estômago e duodeno sob condições de secreção gástrica basal e estimulada (histamina).

Métodos sem sonda para estudar a secreção gástrica. Amostra de Sali. Baseia-se no fato de que apenas o suco gástrico contendo ácido clorídrico e pepsina é capaz de digerir o tecido conjuntivo (catgut).

0,1 g de azul de metileno é derramado sobre um pequeno pedaço de borracha do preservativo e a borracha é enfaixada com categute vaporizado nº 5. O saco é lavado para remover qualquer resíduo de azul de metileno que tenha caído em sua superfície e, em seguida, imerso novamente em um copo de água limpa para verificar a vedação. Se a água não ficar azul, o saco está amarrado corretamente e pronto para uso.

Metodologia. O paciente engole o saco desmóide com o estômago vazio e depois toma o café da manhã. 3,5 e 20 horas depois, três porções de urina são coletadas. Determine o tempo e a intensidade da coloração da urina com azul de metileno.

Avaliação de resultados. No estado hiperácido, todas as três porções da urina são coloridas, sendo a 2ª e a 3ª intensamente azuis; com secreção normal, a 1ª porção não é colorida, a 2ª porção é verde clara; O terceiro é colorido com mais intensidade. Uma leve coloração de apenas a 3ª porção da urina é observada em estado hipoácido.

O estado anácido é caracterizado pela ausência de cor nas três porções da urina do paciente. Se o conteúdo gástrico for fortemente ácido (pH 1,5 e inferior), também não há cor na urina. O pepsinogênio é convertido em pepsina em pH 1,5–3. Se o pH do suco gástrico for inferior a 1,5, ele contém apenas pepsinogênio, que não é capaz de ser digerido. Se um estado anácido for obtido no teste desmóide, recomenda-se repetir o estudo permitindo que o paciente engula o saco desmóide após comer, ou seja, no auge da secreção gástrica.

Teste com teste ácido. Acidotest consiste em comprimidos de benzoato de cafeína e sódio e pílulas de teste (VNR). Você pode substituir os comprimidos de cafeína e benzoato de sódio no teste por um café da manhã de controle. Ingredientes do café da manhã: mingau de arroz, 100 g de carne, 150 g de pão, um copo de chá.

Metodologia. Após o café da manhã de controle, o paciente pode engolir um comprimido de teste, após coletar sua urina em um frasco (urina de controle). Após 1,5 horas, a urina é coletada novamente e os dois frascos são enviados ao laboratório. O controle e a segunda porção de urina são diluídos em água até 200 ml; De cada porção diluída, 5 ml de urina são colocados em um tubo de ensaio, ao qual são adicionados 5 ml de ácido clorídrico a 25%.

Avaliação de resultados. Se o suco gástrico contiver ácido clorídrico livre, uma cor escarlate ou rosa aparecerá no segundo tubo de ensaio. A acidez aproximada do suco gástrico pode ser determinada pela intensidade da cor da urina no segundo tubo de ensaio. A cor do tubo de ensaio é comparada com a cor da escala colorimétrica anexada ao teste ácido.

Estudo da função formadora de enzimas

Método unificado de Tugolukov. Princípio. Determinação da atividade proteolítica do suco gástrico pela quantidade de proteína decomposta. Reagentes: solução de plasma seco a 2% em solução de HCl 0,1 N. Solução de ácido tricloroacético a 10%.

Equipamento.
Tubos de centrífuga (graduados com precisão).
Tubos de ensaio químicos.
Pipetas com capacidade de 1, 2 e 10 ml.
Micropipetas com capacidade de 0,1 ml.
Centrífuga.
Termostato.

Progresso do estudo. O suco gástrico, filtrado em filtro de papel, é diluído 100 vezes (9,9 ml de água e 0,1 ml de suco gástrico medido com micropipeta). 1 ml de suco diluído é colocado em um tubo de centrífuga graduado (experimento) e 1 ml de suco diluído pré-fervido é colocado em outro tubo (controle). Adicione 2 ml de uma solução de plasma seco a 2% em ambos os tubos de ensaio e coloque-os em um termostato a 37°C por 20 horas. Após esse tempo, 2 ml de ácido tricloroacético 10% são despejados em cada tubo de ensaio, misturados com uma vareta de vidro até a suspensão ficar homogênea e centrifugados por 10 minutos a 1500 rpm.

Cálculo. Com base na diferença nos valores dos sedimentos no controle e no experimento, é determinado o grau de digestão das proteínas, seguido do recálculo da quantidade de pepsina. A taxa de digestão do substrato é calculada pela fórmula: M = (A–B) x (40/A), onde M é a taxa de digestão; A é o volume de sedimento no controle; B é o volume de sedimento do experimento; 40 é um valor constante estabelecido experimentalmente.

4,0 mmol/h significa:

A) secreção normal de ácido clorídrico livre

b) alta secreção de ácido clorídrico livre

c) baixa secreção de ácido clorídrico livre

d) secreção acentuadamente reduzida de ácido clorídrico livre

e) aumento acentuado da secreção de ácido clorídrico livre

124. Caso o sangue do paciente entre em contato com a pele desprotegida, deve-se:

a) lavar com água e sabão, tratar com solução de álcool etílico 70%

B) tratar com solução de álcool etílico 70%, lavar com água e sabão, repetir o tratamento com solução de álcool etílico 70%

c) lavar com água e sabão, tratar com tintura de álcool 5% de iodo

125. Caso a pele íntegra esteja contaminada com sangue do paciente, é necessário

A) retirar o sangue com cotonete, tratar a pele com álcool 70 graus, lavar com água corrente e sabão, tratar novamente com álcool 70 graus

b) lavar o sangue com água corrente e sabão

c) lavar o sangue, tratar a pele com iodo

126. O indicador de leucócitos (glóbulos brancos) na máquina hematológica é:

127. O indicador de hemácias (glóbulos vermelhos) na máquina hematológica é:

A) conteúdo absoluto de glóbulos vermelhos

b) concentração de hemoglobina no sangue total

c) contagem absoluta de leucócitos

d) volume médio de um glóbulo vermelho em micrômetros cúbicos (µm) ou femtolitros (fl)

128. O indicador MCV em uma máquina de hematologia é:

a) conteúdo absoluto de eritrócitos

b) concentração de hemoglobina no sangue total

c) contagem absoluta de leucócitos

D) volume médio de um glóbulo vermelho em micrômetros cúbicos (µm) ou femtolitros (fl)

129. O indicador HGB (Hb, hemoglobina) na máquina hematológica é este?:

a) conteúdo absoluto de eritrócitos

B) concentração de hemoglobina no sangue total

c) contagem absoluta de leucócitos

d) volume médio de um glóbulo vermelho em micrômetros cúbicos (µm) ou femtolitros (fl)

130. O indicador MCHC em uma máquina de hematologia é:

d) volume médio de plaquetas

131. O indicador MCV em uma máquina de hematologia é:

a) contagem absoluta de plaquetas

b) conteúdo médio de hemoglobina em um glóbulo vermelho individual em unidades absolutas

d) volume médio de plaquetas

e) concentração média de hemoglobina em um eritrócito

132. O indicador MCH na máquina de hematologia é:

a) contagem absoluta de plaquetas

B) conteúdo médio de hemoglobina em um glóbulo vermelho individual em unidades absolutas

c) volume médio de um glóbulo vermelho em micrômetros cúbicos

d) volume médio de plaquetas

e) concentração média de hemoglobina em um eritrócito

133. O indicador PLT em uma máquina de hematologia é:

A) contagem absoluta de plaquetas

b) conteúdo médio de hemoglobina em um glóbulo vermelho individual em unidades absolutas

c) volume médio de um glóbulo vermelho em micrômetros cúbicos

d) volume médio de plaquetas

e) concentração média de hemoglobina em um eritrócito

134. O indicador MPV (volume médio de plaquetas) em uma máquina de hematologia é:

a) contagem absoluta de plaquetas

b) conteúdo médio de hemoglobina em um glóbulo vermelho individual em unidades absolutas

c) volume médio de um glóbulo vermelho em micrômetros cúbicos

D) volume médio de plaquetas

e) concentração média de hemoglobina em um eritrócito

135. O indicador MCV em uma máquina hematológica é:

a) contagem absoluta de plaquetas

b) conteúdo médio de hemoglobina em um glóbulo vermelho individual em unidades absolutas

B) volume médio de um glóbulo vermelho em micrômetros cúbicos

d) volume médio de plaquetas

e) concentração média de hemoglobina em um eritrócito

136. O indicador PDW em uma máquina de hematologia é:

b) volume médio de plaquetas

137. O indicador HCT em uma máquina hematológica é:

a) largura relativa da distribuição plaquetária por volume, um indicador de heterogeneidade plaquetária.

b) volume médio de plaquetas

c) trombócrito, proporção (%) do volume de sangue total ocupado pelas plaquetas.

D) hematócrito (norma 0,39-0,49), parte (% = l/l) do volume sanguíneo total atribuível às células sanguíneas.

e) concentração de hemoglobina no sangue total

138. O indicador PCT (crítico plaquetário) em uma máquina de hematologia é:

a) largura relativa da distribuição plaquetária por volume, um indicador de heterogeneidade plaquetária.

b) volume médio de plaquetas

C) trombócrito, proporção (%) do volume de sangue total ocupado pelas plaquetas.

d) hematócrito (norma 0,39-0,49), parte (% = l/l) do volume sanguíneo total atribuível às células sanguíneas.

e) concentração de hemoglobina no sangue total

139. O indicador da concentração de hemoglobina no sangue total no aparelho hematológico é:

a) PCT (crítico plaquetário)

D) HGB (Hb, hemoglobina)

e) VPM (volume plaquetário médio)

140. O volume médio de plaquetas em uma máquina hematológica é:

a) PCT (crítico plaquetário)

d) HGB (Hb, hemoglobina)

D) MPV (volume plaquetário médio)

141. O indicador do conteúdo absoluto de leucócitos no aparelho hematológico é:

A) WBC (glóbulos brancos)

d) HGB (Hb, hemoglobina)

e) VPM (volume plaquetário médio)

142. O indicador do volume médio de eritrócitos no aparelho hematológico é:

a) WBC (glóbulos brancos)

d) HGB (Hb, hemoglobina)

e) VPM (volume plaquetário médio)

143. O indicador de hematócrito no aparelho hematológico é:

a) WBC (glóbulos brancos)

d) HGB (Hb, hemoglobina)

e) VPM (volume plaquetário médio)

144. O conteúdo médio de hemoglobina em um glóbulo vermelho individual em um aparelho hematológico é:

a) WBC (glóbulos brancos)

145. O indicador da concentração média de hemoglobina em um eritrócito no aparelho hematológico é:

a) WBC (glóbulos brancos)

146. A contagem absoluta de plaquetas no aparelho hematológico é:

a) WBC (glóbulos brancos)

D) PLT (plaquetas)

147. O indicador do conteúdo absoluto de eritrócitos no aparelho hematológico é:

a) WBC (glóbulos brancos)

B) RBC (glóbulos vermelhos)

d) PLT (plaquetas)

148. Indicadores de índice eritrocitário:

A) (MCV, MCH, MCHC):

b) (MPV, PDW, PCT):

c)(LYM, MXD, GRAN)

149. Indicadores de índice de leucócitos:

a) (MCV, MCH, MCHC):

b) (MPV, PDW, PCT):

B)(LYM, MXD, GRAN)

150. Indicadores de índice plaquetário:

a) (MCV, MCH, MCHC):

B) (MPV, PDW, PCT):

c)(LYM, MXD, GRAN)

151. O indicador RDW-SD em uma máquina de hematologia é:

152. O indicador RDW-CV em uma máquina de hematologia é:

a) largura relativa da distribuição dos eritrócitos por volume, desvio padrão.

B) largura relativa de distribuição de eritrócitos por volume, coeficiente de variação

c) um indicador inespecífico do estado patológico do corpo.

d) conteúdo médio de hemoglobina em um eritrócito.

153. O indicador ESR (ESR) é:

a) largura relativa da distribuição dos eritrócitos por volume, desvio padrão.

b) largura relativa de distribuição de eritrócitos por volume, coeficiente de variação

C) um indicador inespecífico da condição patológica do corpo.

d) conteúdo médio de hemoglobina em um eritrócito.

154. A hemoglobina (Hb, Hgb) em um exame de sangue é:

A) o principal componente dos glóbulos vermelhos,

b) o principal componente dos leucócitos,

c) o principal componente dos linfócitos,

d) o principal componente das plaquetas,

155. Em um analisador hematológico, o conteúdo de leucócitos é medido em:

156. Em um analisador hematológico, o conteúdo de hemoglobina é indicado em:

157. Em um analisador hematológico, o conteúdo eritrocitário é indicado em:

Qual a porcentagem de elementos formados no sangue:

159. Volume de plasma sanguíneo:

Opção nº 5

160. Qual o percentual que ocupa a etapa pós-analítica no laboratório:

161. Que porcentagem leva a etapa pós-analítica fora do laboratório:

162. Que porcentagem leva a etapa pré-analítica fora do laboratório:

163. Que porcentagem ocupa a etapa pré-analítica em laboratório:

164. Com que quantidade de álcool você deve limpar as mãos antes de tirar sangue:

165. De qual extremidade da falange do dedo é retirado o sangue:

166. Profundidade da punção ao tirar sangue de um dedo:

167. Norma de hemoglobina em mulheres:

a) 130-160 g/l

B) 120-140 g/l

c) 125-145 g/l

d) 160-240 g/l

e) 105-125 g/l

168. Norma de hemoglobina em homens:

A) 130-160 g/l

b) 120-140 g/l

c) 125-145 g/l

d) 160-240 g/l

e) 105-125 g/l

169. A urina adquire odor frutado quando:

A). pielonefrite

B). coma diabético

V). cistite

G). síndrome nefrótica

e) cirrose

170. A proteinúria pode acompanhar:

A. glomerulonefrite aguda

b. glomerulonefrite crônica

V. pielonefrite aguda

D. todas as opções acima são verdadeiras

171. A causa da glicosúria é:

A. comendo açúcar em excesso

b. hipersecreção de tiroxina

V. Situações estressantes

D. todas as opções acima são verdadeiras

d.diabetes mellitus

172. Na urina de pacientes com glomerulonefrite aguda observa-se o seguinte:

A. poliúria significativa, relativa densidade 1,030 - 1,035, glicosúria, cetonúria

b. dor. contagem - em leucócitos, eritrócitos. até 100 em p/zr, muitos polimorfos epiteliais

V. significa. quantidade inalterada Er, Le um pouco, hialina. cilindros e células renais. epitélio

g. poliúria, isostenúria, hipostenúria, L 8-10 v/zr, er 3-4, renal. epi, unidades cilindros

173. A filtração da urina é:

A. transição de líquido de dissolvido. contém coisas desde o plasma sanguíneo até o primário. urina

b. retornar absorção de água e solução da urina primária para o sangue. há coisas nele

V. excreção adicional de uma substância estranha do plasma sanguíneo na urina. para substâncias orgânicas

d. formação de urina final

174. A reabsorção de urina é:

A. transição de fluido com substâncias dissolvidas nele do plasma sanguíneo para a urina primária

B. reabsorção de água com substâncias dissolvidas da urina primária para o sangue

V. formação de urina primária a partir do plasma sanguíneo

d. liberação de substâncias estranhas ao corpo do plasma sanguíneo para a urina

d. os pontos 1 e 3 estão corretos

175. Os rins regulam:

A. pressão arterial

b. composição eletrolítica do ambiente interno

V. eritropoiese

D. todas as opções acima são verdadeiras

176. Com base na amostra de Zemnitsky, pode-se julgar:

A. proteinúria

b. hematúria

V. leucocitúria

G. capacidade excretora e de concentração dos rins

d. glicosúria

177. Um aumento na gravidade específica da urina é:

A. enurese

b. disúria

V. isostenúria

G. hiperstenúria

d. hipostenúria

178. Os elementos do sedimento urinário organizado não incluem:

A. leucócitos, eritrócitos

b. sais ácidos de urina

V. sais alcalinos de urina

d. epitélio, cilindros

D. os pontos 2 e 3 estão corretos

179. Testes qualitativos para detecção de proteínas:

A. teste com ácido sulfossalicílico a 3%

b. com 20% de ácido sulfossalicílico

V. Teste do anel de Heller

g. Amostra de Gaines

D. os pontos 2 e 3 estão corretos

180. Reações qualitativas à detecção de glicose na urina:

A. Teste de Gaines

b. tiras de teste de diagnóstico

V. Teste de resina

d. Teste de Fouché

D. amostras especificadas nos parágrafos 2 e 3

181. A urina tem forte odor de amônia quando:

A. coma diabético

b. glomerulonefrite aguda

V. comendo alimentos vegetais

D. decomposição bacteriana devido ao armazenamento prolongado a quente

d. para cirrose

182. Método quantitativo para determinação de glicose na urina:

A. método de cianeto de hemoglobina

B. método enzimático de glicose oxidase (FKD)

V. método vermelho pirogollovy

d. método nefelométrico

d. método turbidimétrico

183. Métodos para determinar a bilirrubina na urina:

A. Teste de Fouché

b. tiras de teste de diagnóstico

V. teste com ácido sulfossalicílico 20%

d. teste de azopiram

D. amostras especificadas nos parágrafos 1 e 2

184. A hipostenúria corresponde à densidade relativa:

A. 1,021 - 1,037

B. 1.003 - 1.004

V. 1,015 - 1,026

1,007 -1,023

d. 1.035 - 1.036

185. Aumenta significativamente a densidade relativa da urina acima do normal:

1. bilirrubina

2. urobilina

3. leucócitos

4. glicose

5. plaquetas

186. A urina da cor de “restos de carne” é observada quando:

A. glomerulonefrite aguda

b. pielonefrite

V. cistite

d. insuficiência renal crônica

D. os pontos 1 e 3 estão corretos

187. Na icterícia hemolítica, cor da urina:

A. marrom escuro (marrom alaranjado)

b. amarelo esverdeado

V. amarelo palha

g. escuro, quase preto

d. os pontos 2 e 3 estão corretos

188. A cor rosa ou vermelha da urina pode indicar a presença de:

A. glóbulos vermelhos

b. hemoglobina

V. mioglobina

D. todas as opções acima são verdadeiras

189. Um alto teor de urato dá cor ao sedimento urinário:

A. marrom ou preto

b. amarelado

V. rosado com tonalidade tijolo

g. em formato de creme com um tom esverdeado

190. Isostenúria indica:

A. inflamação da mucosa da bexiga

b. o aparecimento de proteína na urina

V. o aparecimento de glicose na urina

D. perturbação da reabsorção tubular de água e eletrólitos

191. A proteinúria pode ser um indicador de danos em:

A. glomérulos dos rins

b. Túbulos de rim

V. trato urinário

D. todas as opções acima são verdadeiras

192. O grau de proteinúria reflete:

A. insuficiência renal funcional

b. grau de dano ao néfron

V. grau de comprometimento da reabsorção

D. todas as opções acima são verdadeiras

d. os pontos 2 e 3 estão corretos

193. A proteinúria renal é causada por:

A. filtração e reabsorção prejudicadas de proteínas

b. inflamação do parênquima hepático

V. ingestão de exsudato devido à inflamação dos ureteres e da bexiga

g. pedras nos rins

194. A proteinúria glomerular pode ocorrer com:

A. aumentando a permeabilidade do filtro renal

b. processos inflamatórios do trato urinário

V. distúrbio de reabsorção nos túbulos do néfron

uretrite

195. Nas doenças renais com lesão predominante dos glomérulos, observa-se o seguinte:

A. glicosúria

B. interrupção dos processos de filtração

V. interrupção dos processos de reabsorção

d. violação do processo de secreção

196. Para identificar proteinúria patológica, recomenda-se colher urina:

A. qualquer hora do dia

b. primeira bebida da manhã

B. diária

d. depois de tomar diuréticos

197. Síndrome clínica acompanhada de proteinúria renal:

A. insuficiência cardíaca

b. cistite

B. glomerulonefrite

d. tumor de bexiga

198. Teste qualitativo para proteína:

A. com 10% de álcali

b. com ácido sulfossalicílico a 3%

B. com ácido sulfossalicílico a 20%

com ácido clorídrico a 20%

199. Métodos para detectar urobilina na urina:

A. O teste de Florença

b. Teste de Lange

V. Teste de Gaines

D. Tiras de teste de diagnóstico

Opção nº 6

200. métodos para detectar corpos cetônicos na urina

A. Teste de Lange

b. Teste de Heller

V. tiras de teste de diagnóstico

d. teste com ácido sulfossalicílico a 20%

D. amostras especificadas nos parágrafos 1 e 3

201. Se as regras de coleta de urina para análise geral não forem seguidas, aparece no sedimento:

A. cristais de sal em grandes quantidades

b. epitélio polimórfico em grande número

B. epitélio escamoso em grandes quantidades

d. epitélio renal

202. Epitélio plano em sedimentos em grandes quantidades pode indicar inflamação:

A. pélvis

b. mucosa da bexiga

B. genitália externa

parênquima renal

203. Sob microscopia do sedimento urinário, os cilindros hialinos se parecem com:

A. formações cilíndricas granulares

b. estruturas cilíndricas ásperas com extremidades quebradas

B. formações cilíndricas tenras, claras e quase imperceptíveis

d. formações cilíndricas amareladas

204. Os cilindros eritrocitários são formados quando:

A. leucocitúria renal

B. hematúria renal

V. pedras no ureter

g. pedras na bexiga

205. Sob microscopia do sedimento urinário, os cilindros cerosos se parecem com:

A. formações cilíndricas incolores e transparentes

B. formações cilíndricas ásperas e amareladas com pontas quebradas

V. fios cilíndricos transparentes, uma extremidade é dividida ou estendida na forma de um fio

d. formações cilíndricas granulares

206. Com piúria grave:

A. leucócitos 10 - 30 por campo de visão.

B. leucócitos 80 - 100 por campo de visão.

V. eritrócitos até 10 por campo de visão.

por exemplo, cilindros 4 - 6 no campo de visão.

207. Os uratos se dissolvem no sedimento urinário:

A. aquecimento, adição de álcali

b. em reagente de selênio

V. adicionando ácido acético

d. centrifugação e filtração

208. Sais encontrados na urina alcalina:

A. ácido úrico, uratos

B. tripelfosfatos, urato de amônio, oxalatos

V. oxalatos, fosfatos amorfos, uratos

d. urato de amônio, oxalatos, uratos

209. Piúria é:

A. o aparecimento de pus na urina

b. o aparecimento de um grande número de glóbulos vermelhos na urina

V. alta concentração de proteína na urina

d. epitélio renal

210. O volume da câmara de Goryaev é igual a:

B. 0,9 µl

211. Cristais de limão Sorrel (oxalatos) no sedimento urinário estão presentes na forma de:

A. formações redondas e ovais e octaedros

b. barris marrons

V. agulhas finas transparentes

areia acinzentada

212. A coloração de preparações preparadas a partir de sedimentos urinários pelo método Ziehl-Nelson é realizada se:

A. tumor renal

b. cistite

B. tuberculose

pielonefrite

213. O teste de Nechiporenko determina:

A. número de elementos moldados isolados em 1 minuto

b. função excretora dos rins

B. o número de elementos formados excretados em 1 ml de urina

d. função de concentração da urina

214. Indicadores normais de acordo com o método de Nechiporenko ao contar na câmara de contagem de Goryaev (em 1 ml):

A. glóbulos vermelhos até 1.000, leucócitos até 4.000, cilindros até 20

B. eritrócitos até 1.000, leucócitos até 2.000, sem cilindros

V. eritrócitos até 2.000, leucócitos até 4.000, sem cilindros

d. eritrócitos até 4.000, leucócitos até 1.000, sem cilindros

d. eritrócitos até 4.000, leucócitos até 3.000, sem cilindros

215. Nos recém-nascidos, a hemoglobina é normal:

a) 130-160 g/l

b) 120-140 g/l

c) 125-145 g/l

d) 160-240 g/l

D) 136-196 g/l

216. Norma de hemoglobina aos 1 ano de idade:

e) 5,5-6,3* /l

221. Diâmetro normal dos eritrócitos:

A) 6-8 mícrons

d) 12-14 mícrons

222. Diâmetro dos eritrócitos na microcitose:

A)< 6 мкм

b) >6 µm

V)<9 мкм

d) >12-14 µm

Diâmetro dos glóbulos vermelhos na macrocitose:

A)< 6 мкм

b) >6 µm

B) >9 µm

d) >12-14 µm

224. Diâmetro dos eritrócitos na megalocitose:

A)< 6 мкм

b) >12 µm

V)<12 мкм

D) cerca de 12 mícrons

225. Indicador de cor normal:

226. Hematócrito normal em mulheres:

227. Hematócrito normal em homens:

228. Norma de hematócrito para criança de 3 meses:

D) 32-44%

236. Porcentagem normal de eosinófilos:

237. A porcentagem de basófilos é normal:

238. A porcentagem de linfócitos é normal:

239. A porcentagem de monócitos é normal:

240. Em que ângulo o vidro fosco é mantido ao preparar um esfregaço?

O estudo da função formadora de ácido do estômago significa a determinação da acidez total, ácido clorídrico livre e ligado, resíduo ácido, produção de ácido clorídrico por 1 hora, componentes ácidos e alcalinos da secreção, produção verdadeira de ácido clorídrico, atividade proteolítica e láctica. conteúdo ácido.

A acidez total deve ser determinada no conteúdo gástrico recém-obtido, pois suas propriedades mudam quando em repouso. O conteúdo gástrico é titulado com 0,1 N. solução de hidróxido de sódio na presença de indicadores. Para determinar a acidez total, utiliza-se como indicador a fenolftaleína, que permanece incolor em ambiente ácido, mas torna-se vermelha em ambiente alcalino (em pH 8,2-10).

O ácido clorídrico livre é determinado na presença do indicador dimetilamidoazobenzeno: a cor vermelha que aparece ao titular o conteúdo gástrico com soda cáustica transforma-se em amarelo tijolo (rosa amarelado ou salmão) em pH 2,4-4,0.

Ao determinar o ácido clorídrico ligado, o indicador é o ácido alizarina sulfônico sódico, que em pH 4,3-6,2 muda de cor de amarelo para roxo. Neste caso, ocorre a neutralização de todas as valências ácidas, exceto o ácido clorídrico ligado.

Determinação da acidez do conteúdo estomacal

Reagentes: solução alcoólica de fenolftaleína a 1%, solução alcoólica de dimetilamidoazobenzeno a 0,5% (amarelo de metila, amarelo de dimetila), solução aquosa a 1% de ácido sulfônico de alizarina sódica (vermelho de alizarina S), 0,1 N. Solução de hidróxido de sódio. Todas essas soluções são constantes à temperatura ambiente.

Método Tepfer. 5 ml de conteúdo gástrico filtrado são colocados em dois frascos. Ao primeiro adicione 1-2 gotas de uma solução alcoólica de dimetilamidoazobenzeno a 1% e 1-2 gotas de uma solução alcoólica de fenolftaleína. No segundo - 1-2 gotas de ácido alizarina sulfônico sódico. Titular 0,1 N. solução de hidróxido de sódio com agitação constante. Durante o processo de titulação, o conteúdo gástrico muda de cor.

Na primeira porção do conteúdo gástrico observe a quantidade de álcali necessária para titulação até que a cor vermelha inicial mude para rosa-amarelado, que corresponde à quantidade de ácido clorídrico livre e é detectada pelo dimetilamidoazobenzeno, bem como a quantidade total de álcali utilizada para titulação até o rosa-amarelado a cor muda para uma cor vermelha estável, que corresponde à acidez total e é detectada pela fenolftaleína.

Na segunda porção do conteúdo gástrico observe a quantidade de álcali usada para titulação a partir do momento em que a cor amarela inicial muda para violeta (corresponde à soma de todas as substâncias que reagem com ácido, exceto o ácido clorídrico ligado, e é detectada pelo ácido alizarina sulfônico sódico).

A acidez total é determinada pela quantidade mililitros 0,1 N. solução de hidróxido de sódio usada para titular 100 ml de conteúdo gástrico (unidade de titulação convencional). Como são tomados 5 ml de conteúdo gástrico para titulação e o cálculo é feito por 100 ml, a quantidade de álcali utilizada é multiplicada por 20. Uma unidade de titulação convencional corresponde a uma concentração de ácido clorídrico de 1 mmol/l.

Método Michaelis. Usando este método, a acidez total, o ácido clorídrico livre e ligado são determinados titulometricamente; a definição deste último é condicional.

Na ausência de ácido clorídrico livre no conteúdo gástrico, o ácido clorídrico ligado pode estar dentro dos limites normais ou elevado. A ausência não apenas de ácido clorídrico livre, mas também ligado, é indicada pelo aparecimento de uma cor violeta quando o indicador ácido alizarina sulfônico sódico é adicionado ao conteúdo gástrico.

Devido ao fato de a fenolftaleína mudar de cor não em ambiente neutro, mas sim alcalino (pH 8,2-10,0), os indicadores de acidez total estão um tanto superestimados. Portanto, recomenda-se a utilização de fenol (vermelho de fenol) como indicador, cuja cor muda em pH 7,9.

A titulação com indicadores não é precisa, pois sua cor muda dentro de uma faixa de pH bastante ampla e é avaliada subjetivamente. O método indicador pode ser controlado por medições de pH.

Determinação da acidez pelo método titulométrico com estudo de controlepHconteúdo gástrico. Usando medições de pH, o final da titulação é determinado. O volume é observado como sendo de 0,1 N. soda cáustica, gasta na titulação de 5 ml do conteúdo gástrico a pH 3,0 na presença de dimetilamiloazobenzeno para calcular a quantidade de ácido clorídrico livre e a pH 8,2 na presença de fenolftaleína ou a pH 7,9 na presença de fenolroth para determinar a acidez total.

Na determinação do ácido clorídrico ligado com indicador de ácido alizarina sulfônico sódico, o final da titulação com aparecimento de cor roxa corresponde a pH 6,2 (faixa de flutuação de pH de 4,3 a 6,2).

Assim, a pHmetria de controle elimina a avaliação subjetiva das alterações na cor do conteúdo gástrico titulado na presença de indicadores e, assim, aumenta a precisão do estudo. O cálculo da quantidade de ácido clorídrico livre e ligado e da acidez total é realizado pelo método acima, levando em consideração a quantidade de hidróxido de sódio gasta na titulação.

Se houver uma pequena quantidade de conteúdo gástrico extraído ou sua cor incomum devido a impurezas de sangue, bile ou alimentos, você pode tentar determinar a acidez microquimicamente. O estudo é realizado com conteúdo gástrico diluído. 1 ml de suco gástrico e 5 ml de água destilada são colocados em um copo. Determine a acidez na presença de indicadores titulando 0,1 N com uma microbureta ou pipeta. solução alcalina cáustica. O conteúdo de ácido clorídrico livre é igual à quantidade de álcali usada para titular o conteúdo gástrico até uma cor amarelo-tijolo, multiplicada por 100. A acidez total é determinada pela quantidade de álcali usada para titular o conteúdo gástrico até aparecer uma cor vermelha. (na presença de fenolftaleína), reduzido por 0,05 (número de correção do indicador) e multiplicado por 100 (para acidez acentuadamente reduzida, recomenda-se uma correção do indicador de 0,03).

A acidez deve ser determinada a cada porção de 15 minutos de secreção basal e estimulada, o que permite estabelecer o tipo de curva ácida, importante no diagnóstico de doenças gástricas.

Em pessoas saudáveis ​​e em pessoas com gastrite normácida, durante a fase de secreção estimulada pela histamina, o nível de ácido clorídrico livre aumenta aos 30 minutos e diminui ao final da primeira hora do estudo. Na gastrite com insuficiência secretora, observa-se curva ácida retardada, quando o nível de ácido clorídrico livre aumenta apenas aos 60 minutos. Nestes casos, é necessário continuar a sondagem, pois a produção máxima de ácido pode ser observada aos 90 ou 115 minutos (o nível de ácido clorídrico livre pode estar dentro dos limites normais) e diminui ao final da segunda hora.

Na insuficiência secretora, também é possível uma curva de baixa acidez ou falsa acloridria, na qual, no contexto de um estado anácido, o ácido clorídrico livre aparece apenas no final da segunda hora do estudo e não atinge o nível normal. A insuficiência secretora causada pelo processo inflamatório também é indicada pelo tipo de secreção astênica, ou seja, aumento lento do nível de ácido clorídrico livre até o 45º minuto e sua diminuição abaixo do normal ao final da primeira hora.

No caso de úlcera gástrica, durante o período de exacerbação da doença, observa-se uma curva ácida alongada com aumento lento para níveis elevados de ácido clorídrico livre ao final da segunda hora do estudo.

A presença de úlcera duodenal ou síndrome de Solinger-Ellison é indicada por uma curva ácida alta ou escalonada com aumento dos níveis de ácido clorídrico em comparação ao normal. Nos casos em que existem apenas distúrbios funcionais nos órgãos digestivos, a curva ácida é caracterizada por flutuações irregulares.

Para uma avaliação mais objetiva da função formadora de ácido do estômago, foi introduzido o conceito de fluxo de ácido clorídrico, que caracteriza sua quantidade liberada por unidade de tempo (1 hora) e expressa em milimoles. Para determinar a hora de fluxo do ácido clorídrico, é proposta a seguinte fórmula:

Dch=V 1 *E 1 *0,001+V 2 *E 2 *0,001+V 3 *E 3 *0,001+V 4 *E 4 *0,001

onde Dch é a vazão de ácido clorídrico, mmol; V é o volume de uma porção do conteúdo gástrico, ml; E é a concentração de ácido clorídrico da mesma porção, unidades de titulação; 0,001 - a quantidade de ácido clorídrico em 1 ml de conteúdo gástrico na concentração de 1 mmol/l.

Como o valor do fluxo-hora depende da voltagem horária de secreção, deve-se buscar a extração mais completa do conteúdo gástrico.

Dependendo de qual indicador de acidez do conteúdo gástrico é utilizado no cálculo, existem taxa de fluxo de ácido clorídrico livre e ligado, bem como a acidez total (produtos ácidos), que é determinada com base no valor da acidez total. É comum determinar a vazão de ácido clorídrico livre. A hora de débito da secreção basal de ácido clorídrico é designada BAO (produção de ácido basal - produção de ácido basal), e com estimulação máxima de histamina - MAO (produção máxima de ácido - produção máxima de ácido). A vazão de uma porção recebida com o estômago vazio é designada como vazão de ácido clorídrico em jejum. A hora de débito de ácido clorídrico com estimulação submáxima de histamina é designada SAO (produção submáxima de ácido - produção submáxima de ácido).

Na prática laboratorial, para facilitar a determinação do fluxo-hora do ácido clorídrico, utiliza-se o nomograma de V. V. Kalinichenko et al.. Neste caso, os números que indicam o volume e a acidez de uma determinada porção do conteúdo gástrico, localizados no lado oposto ramos da curva são conectados por uma régua. Na intersecção da régua com o eixo vertical central, é encontrado o valor da vazão.

Os indicadores normais de secreção gástrica são mostrados na tabela.

Indicadores normais da função secretora gástrica
Indicadores	Jejum (valores máximos)	Secreção basal	Resposta consistente à histamina
			submáximo	máximo
Volume, ml
Acidez total, mmol/l
HCl livre, mmol/l
HCl ligado, mmol/l
Fluxo-hora de acidez total, mmol/h
Débito-hora de HCl livre, mmol/h
Fluxo-hora de HCl ligado, mmol/h
Volume de secreção ácida do componente, ml
Hora de fluxo real de HCl, mmol/h
Volume do componente alcalino, ml
Débito-hora de hidrocarbonato, mmol/h

Observação. A secreção de débito-hora com o estômago vazio é calculada em relação ao volume da porção correspondente de suco gástrico.

Determinação da deficiência de ácido clorídrico

A ausência de ácido clorídrico livre no conteúdo gástrico indica inibição da formação de ácido, que é avaliada pela deficiência de ácido clorídrico. A deficiência de ácido clorídrico é determinada titulando o conteúdo gástrico com 0,1 N. uma solução de ácido clorídrico na presença de um indicador (solução alcoólica de dimetilamidoazobenzeno a 1%) até o aparecimento de ácido clorídrico livre.

A deficiência de ácido clorídrico indica para o conteúdo de componentes alcalinos não ligados ao ácido. É geralmente aceito que uma deficiência máxima de ácido clorídrico igual a 40 unidades de título indica a cessação da secreção de ácido clorídrico (acloridria absoluta). Com menor deficiência, o ácido clorídrico é secretado pelas células parietais, mas devido à ligação com componentes alcalinos não é detectado na forma livre ( acloridria relativa).

A acloridria relativa também pode ser observada na ausência de ácido clorídrico livre e ligado. Esta opção é possível nos casos em que todo o ácido clorídrico é neutralizado com bicarbonato de sódio.

Sobre disponibilidade acloridria absoluta pode ser avaliado somente após estimulação máxima de histamina. Essa acloridria é observada principalmente na anemia por deficiência de B 12. Na acloridria absoluta, o pH intragástrico não diminui sob a influência da histamina. Como a estimulação máxima de histamina só pode ser utilizada em casos excepcionais, é aconselhável utilizar a medição do pH intragástrico para diagnóstico.

Uma deficiência significativa de ácido clorídrico indica a presença de produtos de degradação tecidual (pus, sangue) no conteúdo gástrico.

Avaliação da secreção basal

A quantidade de secreção basal de ácido clorídrico livre em pessoas com gastrite anácida e hipoanácida, câncer de estômago é de 0-1 mmol/h, em pessoas saudáveis ​​e naqueles que sofrem de gastrite normácida - 1-4 mmol/h, úlcera gástrica ou duodenal - 4 -5 mmol/h.h (mais de 5 mm/h é geralmente característico de úlcera duodenal), síndrome de Solinger-Ellison - 10-20 mmol/h.

Estimativa da secreção máxima

Secreção máxima igual a zero - acloridria verdadeira é observada na gastrite atrófica, câncer de estômago (nestes casos, deve-se excluir o refluxo do conteúdo duodenal). Um valor de MAO de 1 a 18 mmol/h indica produção insuficiente de ácido em gastrite ou câncer de estômago; 18 - 20 mmol/h - para produção normal (em pessoas saudáveis ​​ou em pessoas com gastrite normácida); 20-26 - para aumento da produção de ácido em pacientes que sofrem de úlcera duodenal, síndrome de Solinger-Ellison.

Avaliação de produtos ácidos com base na proporção de HLW e MAO

Em pessoas saudáveis, a proporção VAO:MAO é de 1:6.

Com inibição funcional e diminuição da reatividade das células parietais, observa-se diminuição da secreção basal, a produção máxima de ácido é normal, BAO:MAO - 1:10 ou 1:12.

Com atrofia ou dano às células parietais, a produção basal e máxima de ácido é reduzida. A relação VAO:MAO pode estar aumentada (se predominar a inibição funcional) ou diminuída (com atrofia pronunciada das células parietais).

Com o aumento da estimulação neurohumoral das células parietais (estado hiperreativo), observa-se um aumento na VAO com MAO normal ou ligeiramente aumentada; VAO:MAO = 1:2 ou 1:3.

Com a hiperplasia das glândulas gástricas, com aumento do número de células parietais, aumenta a secreção máxima e basal.

Determinação de componentes ácidos e alcalinos da secreção gástrica

Ao estudar a vazão do ácido clorídrico, não é determinada a parte do ácido clorídrico que é neutralizada no estômago pelo bicarbonato. Para levar em consideração a parte neutralizada do ácido clorídrico, são determinados o volume dos componentes ácidos e alcalinos e a vazão real do ácido clorídrico.

Componente ácido calculado usando a fórmula de Thomson-Wein

P=V*(0,219+4,88*H+),

onde P é o volume do componente ácido, ml; V é o volume de suco gástrico na porção teste, ml; H + - acidez total em determinada porção, mmol/l; 0,219 e 4,88 são valores constantes.

Componente alcalino determinado pela fórmula:

onde NP é o volume do componente alcalino, ml; V é o volume de uma porção de suco gástrico, ml; P é o volume do componente ácido em uma determinada porção, ml.

Conhecendo o volume do componente ácido, você pode calcular a vazão real do ácido clorídrico usando a seguinte fórmula:

Dvh =З*160*0,001

onde Dvh é a vazão verdadeira de ácido clorídrico, mmol; P é o volume do componente ácido, ml; 160 - o valor da concentração constante de ácido clorídrico secretado pelas células parietais do estômago; 0,001 é a quantidade de ácido clorídrico em 1 ml de conteúdo gástrico na concentração de 1 mmol/l.

Na prática, o volume do componente ácido e a vazão real do ácido clorídrico são determinados usando o seguinte nomograma.

Os indicadores da verdadeira taxa de fluxo de ácido clorídrico incluem todos os produtos ácidos, incluindo a quantidade de ácido clorídrico que é neutralizada pelo bicarbonato do suco gástrico. A verdadeira taxa de produção de ácido clorídrico é superior à MAO.

As propriedades alcalinas da secreção das glândulas gástricas dependem da presença de muco e bicarbonato. A maioria dos autores considera constante a concentração de bicarbonato na secreção alcalina. Segundo a literatura, é de 20-45 mmol/l. Consequentemente, conhecendo o volume do componente alcalino, a vazão do hidrocarbonato é determinada usando a fórmula de Yu I. Fishzon-Ryss:

D hidr =N*P*C*0,001,

onde D hidr. - vazão de hidrocarbonato, mmol/h; C é a concentração de bicarbonato, tomada como valor constante, 45 mmol/l; NP - volume do componente alcalino, ml.

Em pacientes com úlcera duodenal, aumenta não apenas o componente ácido, mas também o componente alcalino da secreção.

Estimativa do componente alcalino da secreção e do verdadeiro fluxo-hora do ácido clorídrico

Pela quantidade de secreção do componente alcalino pode-se avaliar a gravidade da doença e o grau de compensação da função secretora do estômago em condições hiperácidas.

Se, em altas taxas de fluxo-hora real de ácido clorídrico, o nível do componente alcalino também for alto, ocorre um estado hiperácido compensado. Nos casos em que, com uma vazão real elevada de ácido clorídrico, o teor do componente alcalino aumenta ligeiramente, podemos falar em subcompensação. A diminuição da produção do componente alcalino no estado hiperácido indica descompensação e possibilidade de desenvolvimento de úlcera péptica do estômago ou duodeno.

Assim, um nível elevado de substâncias alcalinas no conteúdo gástrico indica um curso mais brando de doenças acompanhadas de acidez elevada e, inversamente, um nível baixo do componente alcalino indica um curso mais grave da doença.

Um dos métodos para estudar a secreção gástrica é determinar a taxa de secreção de íons hidrogênio usando um teste máximo de histamina ou pentagastrina.

A pesquisa é realizada da seguinte forma. O paciente engole uma sonda gástrica com o estômago vazio, cuja extremidade deve estar localizada na parte inferior do estômago (sua posição é controlada por fluoroscopia), o que permite a sucção máxima do suco gástrico. Uma porção da secreção com o estômago vazio é sugada por 5 minutos e descartada. O paciente recebe suco gástrico a partir da secreção basal de hora em hora, sugando-o regularmente com uma seringa. 30 minutos após o início da coleta do suco gástrico, 1 ml de solução de difenidramina a 1% é injetado por via intramuscular.

Após receber uma hora de secreção basal, uma solução de dicloridrato de histamina a 0,1% é administrada por via subcutânea na proporção de 0,025 mg/kg de peso corporal. Após 10 minutos, começam a coletar uma porção da secreção gástrica máxima ao longo de 1 hora. Meça o volume das duas porções horárias obtidas, coloque 20 ml de cada porção em copos, mergulhe o eletrodo da sonda de pH e determine o pH. Posteriormente, utilizando os dados de volume de porções horárias de secreção e pH, a taxa de secreção de íons hidrogênio (H+) é determinada por meio de um nomograma.

Quase em pH = 3,15, a taxa de secreção de H + = 0. No pH intragástrico de 0,7 a 2,0, a taxa de secreção de H + é determinada por meio de um nomograma, conectando o volume e o pH do suco gástrico com uma régua. A interseção da régua com a escala de taxa de secreção de H+ indica o valor correspondente em milimoles por hora. Em valores de pH de 2,0 a 3,15, a taxa de secreção de H + é determinada da mesma forma, mas o valor do pH é reduzido em 1,0 e o resultado é reduzido em 10 vezes (o ponto decimal é movido para a esquerda lugar).

A taxa normal de secreção de íons hidrogênio em uma porção da secreção basal varia de 0 a 5 mmol/h, estimulação máxima de histamina - de 5 a 20 mmol/h, quando se usa pentagastrina - de 9 a 22 mmol/h.

O método acima para determinar a acidez do suco gástrico não é preciso, pois o estudo da acidez do suco gástrico aspirado, no qual o componente ácido é neutralizado pelo alcalino, dá resultados deliberadamente subestimados. Erros na determinação da quantidade de produção de ácido clorídrico podem ser devidos à extração incompleta do suco gástrico. A pHmetria intragástrica permite eliminar essas imprecisões.

IntragástricopH-metria é realizada usandopH-sonda. É aconselhável utilizar uma sonda de pH de dois canais, que permite medir o pH diretamente na parede do estômago, ou seja, determinar a acidez primária na região do fundo do estômago, onde a secreção tem um reação ácida, e na região do piloro, onde suas glândulas secretam uma secreção alcalina, que normalmente é capaz de neutralizar o ácido. O registro simultâneo do valor do pH nas partes indicadas do estômago permite estudar a função secretora de ácido e a capacidade alcalinizante do suco gástrico.

A sonda usada para medição de pH tem 5 mm de espessura, cerca de 1,5 mm de comprimento e é coberta por uma capa plástica macia e lisa. Na extremidade da sonda há uma azeitona metálica na qual são montados eletrodos (antimônio e calomelano). Uma sonda de pH é inserida com o estômago vazio, aproximadamente 0,7 m, com um eletrodo localizado no corpo do estômago e outro na caverna pilórica. É aconselhável inserir a sonda sob controle de raios X. Ele é conectado a um medidor de pH especial - o acidomecanógrafo Linara ou a um medidor de pH de laboratório convertido, no qual são montadas duas faixas de medição para o corpo do estômago e a caverna pilórica. Normalmente, com o estômago vazio, o pH no corpo do estômago é 5,0-6,0, na caverna pilórica - 7,0, o que indica repouso fisiológico da secreção gástrica.

Segundo alguns dados, são possíveis as seguintes flutuações nos valores de pH da secreção basal do corpo do estômago: 0,8-1,5 - hiperacidez (estômago ácido ou irritável); 1,6-2,0 - normalacidez; 2,1-5,9 - hipoacidez; 6,0 e acima - acloridria.

O estabelecimento de um pH baixo ainda não fornece informações completas sobre a força da função formadora de ácido do estômago. Para diferenciar baixas taxas de secreção basal (hiperacidez, normacidez), não são utilizados estimulantes, mas superpressores de secreção gástrica. Nestes casos, é utilizado um teste de atropina.

Depois de inserir uma sonda de pH no estômago e realizar o monitoramento de raios X para garantir seu posicionamento correto, o pH basal do fundo e do antro do paciente é registrado dentro de 1 hora (4-6 determinações em intervalos de 10-15 minutos).

Se for detectado um pH basal baixo (menos de 2,0), 1 ml de sulfato de atropina a 0,1% é injetado por via subcutânea e o registro do pH (pH sequencial) é continuado da mesma forma durante a próxima hora. Os resultados do teste de atropina são avaliados não apenas pelo grau e duração do aumento do pH, mas também pela diferença nos valores médios do pH basal e sequencial (alterações de curto prazo no pH observadas no refluxo duodenogástrico não são levado em conta). Nos casos em que o pH intragástrico aumenta na última medição, são realizadas duas medições adicionais (em intervalos de 10-15 minutos) para excluir o refluxo duodenogástrico.

Com base no grau de aumento do pH, distinguem-se as seguintes reações ao teste de atropina:

• pH acima de 2,0 - forte;
• de 1,0 a 2,0 - média;
• de 0,5 a 1,0 - fraco;
• menos de 0,5 - insignificante;
• sem alteração - negativo.

Se a diferença entre os valores médios de pH basal e sequencial for 0,6, o teste de atropina é considerado fracamente positivo, 0,02 é considerado negativo. Se a diferença de pH for superior a 0,6, é positivo.

A avaliação do teste de atropina é possível não apenas pelos valores médios das medições horárias de pH basal e sequencial, mas também pelo valor de pico do pH no fundo do estômago após a administração de atropina. Este método de determinação do pH intragástrico é mais informativo, porém, com refluxo duodenogástrico, resultados colaterais são possíveis.

De acordo com a capacidade alcalinizante das secreções gástricas na região da caverna pilórica, distinguem-se:

• formação de ácido compensado, quando o pH do antro ultrapassa o pH do corpo do estômago e fica próximo do neutro;
• formação ácida descompensada com ligeira diferença entre o pH do antro (área neutralizante) e do corpo do estômago (área formadora de ácido);
• formação de ácido parcialmente compensada com uma diferença entre o pH do antro e do corpo do estômago 1,0-1,5.

Assim, o teste de atropina permite identificar entre pacientes com pH intragástrico baixo e com o estômago vazio um grupo de indivíduos resistentes à atropina nos quais a sondagem fracionada revela grande produção de ácido clorídrico devido à sua alta secreção. Em pacientes sensíveis à atropina, o volume de secreção de ácido clorídrico é menos elevado. O teste de atropina aumenta o conteúdo informativo da pHmetria intragástrica e serve como teste diagnóstico e prognóstico para úlceras duodenais e outros tipos de hipercloridria gástrica. É usado para selecionar um método cirúrgico para o tratamento de úlceras pépticas.

O grau de compensação para um estômago ácido pode ser avaliado com base na pHmetria intragástrica com uma carga de bicarbonato de sódio - teste alcalino.

Determinação de ácido láctico

Além do ácido clorídrico, o conteúdo do estômago pode conter outros ácidos, dos quais o ácido láctico é de maior interesse clínico. Aparece como resultado de um distúrbio metabólico em um tumor maligno que afeta o estômago, ou durante processos de estagnação no estômago, na ausência de ácido clorídrico livre e na presença de bastões de fermentação de ácido láctico.

Os testes qualitativos para detecção de ácido láctico baseiam-se no aparecimento de uma cor amarelo-esverdeada quando interage com o cloreto férrico como resultado da formação de lactato de ferro.

Determinação da atividade da pepsina

A determinação da atividade da pepsina é baseada em métodos indiretos de estudo da capacidade digestiva do conteúdo gástrico. Vários métodos foram propostos, que diferem entre si na utilização de diferentes substratos para digestão e no tempo de contato com a enzima. Para determinar a atividade proteolítica total, pode-se tomar suco gástrico nativo ou suco gástrico com um tampão que garanta a ação ideal da pepsina.

O método mais comum para determinar a atividade da pepsina é Método Tugolukov. Com sua ajuda, é possível determinar a pepsina do suco gástrico, o uropepsinogênio e o pepsinogênio no sangue, o que permite comparar os dados obtidos. O conteúdo de pepsina no conteúdo gástrico é avaliado pela quantidade de proteína plasmática seca digerida.

Na determinação do fluxo-hora (tensão horária) da pepsina, seu conteúdo em mililitros em uma determinada porção é multiplicado pelo volume de uma porção do conteúdo gástrico e, em seguida, somam-se os indicadores obtidos ao longo de 1 hora.

O segundo método unificado para determinar a atividade da pepsina é Método Anson modificado por Chernikov. Baseia-se no estudo da capacidade digestiva da pepsina do suco gástrico na presença de hemoglobina como substrato.

Os valores normais da atividade da pepsina devem ser derivados de testes de doadores em cada laboratório porque dependem da atividade da pepsina cristalina usada para construir a curva de calibração.

Também é usado para determinar a atividade da pepsina. Método de Hunt, em que a proteína do plasma sanguíneo é usada como substrato. A medição é realizada em colorímetro médico após adição do reagente de Folin, para avaliação utiliza-se uma tabela de calibração construída a partir do estudo de soluções padrão de pepsina. Ao determinar a quantidade de pepsina liberada por hora, a voltagem horária é levada em consideração.

Conteúdo de pepsina em pessoas saudáveis em porção, a secreção basal varia de 50 a 300 mg/h, com estimulação máxima de histamina - de 100 a 900 mg/h. Existe um paralelismo entre a produção de ácido clorídrico e o teor de pepsina. No caso de úlcera gástrica e duodenal, esses indicadores são elevados, na gastrite crônica com insuficiência secretora são reduzidos, mas no caso de achylia não se observa ausência de pepsina.

Determinação intragástrica da atividade proteolítica do suco gástrico

Para estudo intragástrico da atividade proteolítica do suco gástrico, um tubo de policloreto de vinila com substrato (albumina técnica ou proteína coagulada de frango), colocado em um cilindro metálico soldado a um cabo de aço rígido, é inserido através de uma sonda. 1 hora após a inserção do tubo com o substrato, ele é retirado do estômago através de um tubo, uma dose submáxima ou máxima de histamina é administrada por via parenteral e o substrato é reintroduzido por 1 hora para avaliar a gravidade da proteólise no estômago não apenas durante o período de secreção basal, mas também estimulada pela histamina.

Grau de proteólise intragástricaé estimado pelo volume de substrato digerido e expresso em microgramas por hora. Após a retirada da sonda do estômago, determina-se a quantidade de proteína digerida e a seguir é colocada em 20 N. solução de ácido clorídrico para avaliar a digestão adicional da albumina, que ocorre devido à pepsina que penetrou no substrato a partir do conteúdo gástrico. A intensidade da proteólise adicional da albumina é determinada pela concentração de pepsina no estômago. Consequentemente, a quantidade de substrato digerido, determinada imediatamente após a sua permanência de uma hora no estômago, avalia o grau de proteólise intragástrica, e os dados sobre proteólise adicional do substrato refletem a concentração de pepsina no conteúdo do estômago.

Tanto sob condições de secreção basal como após estimulação submáxima de histamina em pacientes que sofrem de úlcera duodenal, a proteólise adicional é maior do que em pessoas saudáveis.

O estudo intragástrico da atividade proteolítica do suco gástrico tem importante valor diagnóstico, pois reflete o estado funcional do aparelho secretor do estômago em condições tão próximas quanto possível das fisiológicas.

A atividade proteolítica total do suco gástrico pode ser determinada pelo método microexpress de A. A. Pokrovsky.

Definição de fator interno

O fator intrínseco é um componente do muco estomacal. É determinado de forma simplificada ( de acordo com o método Glass-Boyd), baseado na precipitação de proteínas e na ação do ácido clorídrico e do hidróxido de sódio sobre o precipitado.

A concentração do factor intrínseco normalmente com o estômago vazio é de 0-0,2 g/l, após um pequeno-almoço de teste em pessoas saudáveis ​​verifica-se que é de 0,2-0,5 g/l.

Muito a concentração de internos fator na úlcera duodenal, que é especialmente pronunciada no período interdigestivo.

Reduzindo a quantidade de fator interno observado na gastrite crônica e indica atrofia das glândulas gástricas. Uma diminuição pronunciada na secreção do fator interno indica a possibilidade de desenvolver anemia por deficiência de B 12.

Os dados obtidos no estudo do fator interno não têm significado independente, apenas complementam os resultados do estudo da função formadora de ácido do estômago.

Inspecione as porções recebidas do conteúdo gástrico:

1. Cor: O conteúdo gástrico normal é ligeiramente acinzentado. Se o suco gástrico que você recebe estiver amarelo, isso indica que o paciente tem refluxo duodenogástrico (refluxo do conteúdo do duodeno para o estômago); do vermelho ao marrom - pela presença de sangue, dependendo da quantidade de sangue e do grau de acidez do ambiente.

2. Consistência: normalmente o conteúdo gástrico é líquido, dependendo da quantidade de muco: quanto mais muco, mais viscoso e viscoso é o conteúdo gástrico. Uma grande quantidade de muco pode indicar a presença de gastrite. O muco flutuando na superfície ou localizado na forma de flocos grossos e caroços vem da boca e da nasofaringe.

3. Odor: o conteúdo gástrico normal apresenta um odor levemente ácido, que lembra o cheiro de pão. Um odor pútrido ocorre quando as proteínas apodrecem (com estagnação como resultado de estenose pilórica, desintegração de um tumor cancerígeno), quando a concentração de ácido clorídrico diminui devido aos produtos de fermentação resultantes - ácidos butírico, acético e láctico.

4. Impurezas: no conteúdo do estômago com o estômago vazio, às vezes formam-se restos da comida de ontem (com estenose pilórica), o que indica uma violação do seu esvaziamento.

Comece um estudo químico do suco gástrico - a função formadora de ácido do estômago:

Em cada porção, por titulação, determine o ácido clorídrico livre (na forma de íons hidrogênio e cloro dissociados), a acidez total (a soma de todas as valências ácidas do estômago), o ácido clorídrico ligado (localizado em conexão com as moléculas de proteína) e ácido lático.

Comece quantificando o total

acidez do suco gástrico:

A determinação quantitativa da acidez total do suco gástrico é determinada por titulação com solução de hidróxido de sódio 0,1 N na presença do indicador fenolftaleína. A acidez é expressa pela quantidade de ml de hidróxido de sódio necessários para neutralizar 100 ml de suco. Os resultados são registrados em unidades de titulação ou mmol/l (unidades SI), que são iguais em termos numéricos. Meça 10 ml de suco gástrico filtrado de 1 porção no frasco, adicione 2 gotas de solução de fenolftaleína a 0,5%. Despeje hidróxido de sódio 0,1 N em uma bureta. Titular com solução de hidróxido de sódio 0,4 N de uma bureta até aparecer uma cor rosa fraca que não desaparece em 1/2 - 1 minuto. Observe quantos ml de álcali foram utilizados para titulação, pois é necessário convertê-lo para 100 ml de suco; multiplique a quantidade de álcali usada para titulação por 10. Exemplo de cálculo: se a titulação de 10 ml de suco requer 5 ml de hidróxido de sódio 0,1 N, então a acidez total é igual a 5X10 = 50 ml de álcali ou 50, ou seja, em 100 ml de suco. Assim, determine a acidez total em todas as porções recebidas (de 1 a 12), anote os resultados.

Determine a quantidade de ácido clorídrico livre:

A quantidade de ácido clorídrico livre no suco gástrico é medida pela quantidade de ml de hidróxido de sódio 0,1 N gastos na neutralização de 100 ml de suco gástrico na presença do indicador dimetilaminoazobenzeno. A 10 ml de suco, adicionar 2 gotas de solução alcoólica de dimetilaminoazobenzeno a 0,5% e titular com solução de hidróxido de sódio 0,1 N até aparecer uma cor laranja, lembrando a cor do salmão (na presença de ácido clorídrico livre, o dimetilaminoazobenzeno adquire uma cor vermelha ). A seguir, também é necessário recalcular os dados obtidos por 100 ml de suco. Se, ao titular 10 ml de suco, foram utilizados 3 ml de indicador, então para 100 ml - 10 vezes mais, ou seja, 3 X 10 = 30 ml ou 30, ou seja,

Esses estudos podem ser realizados AO MESMO TEMPO:

A 10 ml de suco adicione 2 gotas de dimetilaminoazobenzeno e 2 gotas de fenolftaleína. Titule a solução de soda cáustica 0,1 N até a cor salmão (1 marca da quantidade de soda cáustica gasta corresponde à quantidade ácido clorídrico livre), então titule até obter uma cor amarelo limão (a 2ª marca é usada para determinar ácido clorídrico ligado), em seguida titular até a cor ficar rosa (a 3ª marca corresponde a acidez total). Também multiplicamos os indicadores resultantes por 10 (convertidos em 100 ml de suco). A média aritmética entre 2 e 3 valores é considerada adequada ácido clorídrico geral.

Usando este método, determine a acidez total, ácido clorídrico livre, ligado e total em todas as 12 porções e anote os resultados.

Na fase de secreção basal (antes da introdução do desjejum), o nível de acidez total é normal até 40, ou seja, ácido clorídrico livre - até 20. Após estimulação segundo Leporsky com caldo de repolho, os valores máximos normais de a acidez total é 40-60, ou seja, ácidos clorídricos livres – 20-40, ou seja, após estimulação submáxima com histamina, a acidez total aumenta para 80-100, ou seja, ácido clorídrico livre – 60-85. Com estimulação máxima pela histamina, a acidez total é 100-120, ou seja, o ácido clorídrico livre é 90-110.

Se for detectado aumento nos níveis de acidez no paciente examinado (hiperacidite), é necessário excluir úlcera duodenal ou duodenite neste paciente. Uma diminuição (hipoaciditas) ou ausência completa de ácido clorídrico livre (anaciditas) é observada no câncer de estômago, gastrite crônica com secreção reduzida e colecistite crônica. Se você realizou um estudo segundo Leporsky com um café da manhã de repolho e recebeu zero valores de ácido clorídrico livre, é necessário realizar um estudo da secreção gástrica com administração subcutânea de histamina. Se, após sua administração, não aparecer ácido clorídrico livre (não há reação à introdução de histamina), isso indica com mais segurança um estado anácido.

Comece a traçar curvas de acidez pela concentração de ácido clorídrico livre.

a) Selecione a escala de construção: o tempo é traçado ao longo do eixo das abcissas, cada 5 mm do eixo corresponde a 15 minutos de pesquisa. A ordenada é a quantidade de ácido clorídrico livre em unidades de titulação, 1 mm no eixo corresponde ao número de unidades de titulação de ácido clorídrico livre.

b) Construa um gráfico- curva de acidez.

Avalie o tipo de acidez: em uma pessoa saudável, após a introdução de um estímulo - um café da manhã teste - observa-se um aumento gradual da acidez. Seu aumento máximo é observado aos 55 minutos. Existem vários tipos de curva de acidez:

· tipo excitável, quando a concentração de ácido clorídrico livre atinge rapidamente níveis elevados e diminui gradativamente;

· o tipo astênico representa um aumento rápido e uma diminuição igualmente rápida na concentração de ácido clorídrico livre para 0 (concentração máxima em 20-30 minutos);

· tipo inerte, inibitório - um aumento lento na concentração e uma diminuição lenta, e a concentração máxima de ácido clorídrico livre é significativamente reduzida além do tempo do estudo;

· quarto tipo de curva - a acidez mantém-se constantemente num nível elevado;

· quinto tipo de curva - a acidez permanece constantemente em nível baixo, praticamente sem reação ao estímulo.

Em uma pessoa saudável, os indicadores de ácido clorídrico total e livre no suco gástrico mudam paralelamente. A diferença entre eles não excede 10-15, ou seja, Uma lacuna entre a acidez total e livre de mais de 15, ou seja, indica um aumento na quantidade de ácidos orgânicos ou produtos proteicos (proteínas alimentares, exsudato inflamatório, produtos de decomposição de tumores cancerígenos).

Para uma avaliação mais objetiva da função de formação de ácido do estômago, calcule hora de fluxo de ácido clorídrico.

Taxa de fluxo de ácido clorídrico- a quantidade de ácido liberada por unidade de tempo.

Hora de débito- a quantidade de ácido produzida pelo estômago em uma hora.

Calcule a vazão de ácido clorídrico em mg em cada porção usando a fórmula:

D= (VE X 36,5) / 1000, onde

V é a quantidade de suco gástrico recebida durante um determinado período de tempo;

E é o nível de ácido clorídrico livre durante o mesmo tempo em unidades de titulação;

36,5 - peso molecular relativo do ácido clorídrico.

Exemplo de cálculo. Em 1 porção, a quantidade de suco resultante é de 40 ml, a quantidade de ácido clorídrico livre nesta porção é de 12, ou seja, consumo de ácido clorídrico em 1 porção:

D= 40 X 12 X 36,5/1000 (mg)

Da mesma forma, calculamos o índice de acidez total, onde E é a quantidade de acidez total em cada porção em unidades de titulação.

Calcule a vazão de ácido clorídrico e a acidez total em cada porção (de 1 a 12), proceda ao cálculo da vazão de ácido clorídrico, ou seja, a quantidade de ácido livre liberada por hora na fase de secreção basal (antes da introdução do café da manhã ), na fase I de tensão horária e na fase de tensão de 2 horas. Some a vazão de ácido clorídrico em 1 porção com a vazão de ácido clorídrico em 2, 3, 4 porções e obtenha a vazão de ácido clorídrico na fase de secreção basal. Em seguida, some a produção de ácido clorídrico em 5, 6, 7, 8 porções, obtenha a hora de saída na fase 1 da tensão de secreção horária, etc.

Normalmente, a hora de débito de ácido clorídrico livre na fase de secreção basal é de 50-150 mg, na fase de tensão horária de 50-100 mg.

Um aumento na hora de fluxo é típico da úlcera péptica, especialmente com localização da úlcera no bulbo duodenal, distúrbios funcionais do estômago com aumento da secreção. A hora de fluxo diminui com câncer de estômago e gastrite atrófica.

Nos últimos anos, grande importância prática tem sido atribuída aos dados de acidez geral quando se utiliza o método de intubação gástrica com sonda fina, isso se deve ao fato de que ao retirar o conteúdo do estômago de seu seio (uma mistura de secreções das glândulas fúndicas e antrais), o nível de ácido clorídrico livre não refletirá o verdadeiro quadro do estado de formação de ácido gástrico devido à ligação do ácido clorídrico pela secreção antral. Portanto, na prática clínica, é dada importância crescente à vazão calculada com base na acidez total.

A produção horária de produção de ácido durante o período de secreção basal é designada BAO (produção de ácido basal), durante a fase de tensão horária durante a estimulação submáxima - SAO (produção de ácido submáxima), durante a estimulação máxima - MAO (produção máxima de ácido). Os indicadores MAO e SAO dependem da massa das células parietais, portanto permitem avaliar o estado da mucosa gástrica.

Realize a reação qualitativa de Uffelmann

para ácido láctico

A 20 gotas de uma solução de ácido carbólico (fenol) a 1%, adicione 1-2 gotas de uma solução de cloreto férrico a 10%. A solução resultante é de cor púrpura (fenolato de ferro). Despeje o suco gástrico gota a gota em um tubo de ensaio com fenolato de ferro. Na presença de ácido láctico, a cor violeta torna-se verde-amarelada devido à formação de ferro láctico.

Os métodos de titulação com indicadores de coloração não permitem determinar com precisão a acidez do conteúdo gástrico com mistura de bile e sangue, além disso, a acidez na faixa de pH de 3,5 a 7,0 é definida por esses métodos como anacidez. Dados mais precisos sobre a verdadeira acidez do suco gástrico são fornecidos pela medição da concentração de íons de hidrogênio livres usando pHmetria intragástrica.

Uma das principais tarefas após a conclusão da perfuração de um poço é calcular sua vazão. Algumas pessoas não entendem muito bem o que é a vazão de um poço. Em nosso artigo veremos o que é e como é calculado. Isso é necessário para entender se ele pode atender à necessidade de água. O cálculo da vazão do poço é determinado antes que a organização de perfuração lhe emita o passaporte do objeto, pois os dados por ela calculados e os reais nem sempre podem coincidir.

Como determinar

Todos sabem que o objetivo principal de um poço é fornecer aos proprietários água de boa qualidade e em quantidade suficiente. Isso deve ser feito antes da conclusão do trabalho de perfuração. Então esses dados precisam ser comparados com aqueles obtidos durante a exploração geológica. A exploração geológica fornece informações sobre se existe um aquífero em um determinado local e qual sua espessura.

Mas nem tudo depende da quantidade de água que está no local, porque muito determina a correta construção do próprio poço, como foi projetado, em que profundidade e qual a qualidade do equipamento.

Dados básicos para determinação de débito

Para determinar a produtividade de um poço e sua conformidade com as necessidades de água, a determinação correta da vazão do poço ajudará. Por outras palavras, terá água suficiente deste poço para as necessidades da sua casa?

Nível dinâmico e estático

Antes de descobrir qual é a vazão de um poço de água, você precisa obter mais alguns dados. Neste caso estamos falando de indicadores dinâmicos e estáticos. Diremos agora o que são e como são calculados.

É importante que a vazão seja um valor variável. Depende completamente das mudanças sazonais, bem como de algumas outras circunstâncias. Portanto, é impossível estabelecer seus indicadores exatos. Isso significa que aproximações devem ser usadas. Este trabalho é necessário para determinar se um determinado abastecimento de água é suficiente para condições normais de vida.

O nível estático mostra quanta água está no poço sem retirada. Este indicador é calculado medindo desde a superfície da terra até a superfície da água. Precisa ser determinado quando a água para de subir na próxima ingestão.

Taxas de produção de campo

Para que a informação seja objetiva, é preciso esperar até que a água atinja o nível anterior. Só então você poderá continuar sua pesquisa. Para que as informações sejam objetivas, tudo deve ser feito de forma consistente.

Para determinar a vazão, precisaremos estabelecer indicadores dinâmicos e estáticos. Apesar de para maior precisão ser necessário calcular o indicador dinâmico várias vezes. Durante o cálculo, é necessário bombear em diferentes intensidades. Neste caso o erro será mínimo.

Como o fluxo é calculado?

Para não perder a cabeça pensando em como aumentar a vazão de um poço após sua entrada em operação, é necessário realizar os cálculos com a maior precisão possível. Caso contrário, você poderá não ter água suficiente no futuro. E se com o tempo o poço começar a assorear e a produção de água diminuir ainda mais, o problema só vai piorar.

Se o seu poço tiver aproximadamente 80 metros de profundidade, e a área onde começa a captação de água estiver localizada a 75 metros da superfície, o indicador estático (Hst) estará na profundidade de 40 metros. Esses dados nos ajudarão a calcular a altura da coluna d'água (Hw): 80 – 40 = 40 m.

Existe um método muito simples, mas seus dados nem sempre são verdadeiros, um método para determinação da vazão (D). Para instalá-lo, é necessário bombear a água por uma hora e depois medir o nível dinâmico (Hd). Você pode fazer isso sozinho, usando a seguinte fórmula: D = V*Hw/Hd – Hst. A intensidade de bombeamento m 3 /hora é designada V.

Neste caso, por exemplo, você bombeou 3 m 3 de água em uma hora, o nível caiu 12 m, então o nível dinâmico foi 40 + 12 = 52 m. Agora podemos transferir nossos dados para a fórmula e obter um vazão que é de 10 m 3 / hora .

Quase sempre, esse método é utilizado para cálculo e entrada no passaporte. Mas não é altamente preciso, uma vez que a relação entre intensidade e indicador dinâmico não é levada em consideração. Isso significa que eles não levam em consideração um indicador importante - a potência do equipamento de bombeamento. Se você usar uma bomba mais ou menos potente, este indicador será significativamente diferente.

Usando uma corda com fio de prumo você pode determinar o nível da água

Como já dissemos, para obter cálculos mais confiáveis, é necessário medir várias vezes o nível dinâmico, utilizando bombas de diferentes potências. Só assim o resultado estará mais próximo da verdade.

Para realizar cálculos usando este método, é necessário aguardar após a primeira medição até que o nível da água retorne ao nível anterior. Em seguida, bombeie a água por uma hora com uma bomba de potência diferente e depois meça o indicador dinâmico.

Por exemplo, eram 64 m3 e o volume de água bombeada era de 5 m3. Os dados obtidos durante duas amostragens nos permitirão obter informações através da seguinte fórmula: Du = V2 – V1/ h2 – h1. V - com que intensidade foi feito o bombeamento, h - quanto o nível caiu em relação aos indicadores estáticos. Para nós eram 24 e 12 m, assim obtivemos uma vazão de 0,17 m 3 / hora.

A vazão específica de um poço mostrará como a vazão real mudará se o nível dinâmico aumentar.

Para calcular o débito real, utilizamos a seguinte fórmula: D = (Hf – Hst)*Du. Hf mostra o ponto superior onde começa a captação de água (filtração). Tomamos 75 m para este indicador, substituindo os valores na fórmula, obtemos um indicador que é igual a 5,95 m 3 / hora. Assim, este indicador é quase duas vezes menor que o registrado no passaporte do poço. É mais confiável, então você precisa confiar nele para determinar se tem água suficiente ou se precisa de um aumento.

Se você tiver essas informações, poderá estabelecer a vazão média do poço. Mostrará a produtividade diária do poço.

Em alguns casos, a instalação de um poço é feita antes da construção da casa, por isso nem sempre é possível calcular se haverá água suficiente ou não.

Para não resolver a questão de como aumentar o débito, é preciso exigir que os cálculos corretos sejam feitos imediatamente. Informações precisas também devem ser incluídas no passaporte. Isso é necessário para que, caso surjam problemas no futuro, o nível anterior de ingestão de água possa ser restaurado.

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